РАСПРЕДЕЛЕНИЕ ОДНОНИТЕВЫХ РАЗРЫВОВ ДНК ЯДЕР ООЦИТОВ В УСЛОВИЯХ ВЛИЯНИЯ АН-ТИОКСИДАНТА, БЛОКАТОРА ПАРП, СУБСТРАТА NOS, БЛОКАТОРА iNOS

Срибная В. А., Грушка Н. Г., Кондрацкая Е. А., Блашкив Т. В., Янчий Р. И.

КЛИНИЧЕСКАЯ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА

Научная статья.

Цель работы заключалась в исследовании распределения однонитевых разрывов ДНК ядер ооцитов в условиях воздействия антиоксиданта, блокатора ПАРП, субстрата NOS, блокатора iNOS in vitro. Для изучения распределения однонитевых разрывов ДНК ядер ооцитов использовали метод щелочного гель-электрофореза изолированных клеток (метод ДНК-комет – «DNA-comet assay»). Полученные данные о распределении однонитевых разрывов ДНК ооцитов в условиях воздействия антиоксиданта (ресвератрол), блокатора ПАРП (4-гидроксиквиназолин), субстрата NOS (L-аргинин), блокатора iNOS (аминогуанидин) дают основания утверждать, что NO участвует в регуляции репарации однонитевых разрывов ДНК ооцитов, что может обеспечить в будущем обоснования новых подходов, на-правленных на уменьшение повреждения ДНК, а значит и в терапевтических целях –на коррекции пре-ждевременной недостаточности яичников у женщин.

однонитевые разрывы ДНК, ооциты, преждевременная недостаточность яичников

1. Kas’yan Ye.S. Problema prezhdevremennoy yaichnikovoy nedostatochnosti. Sovremennyye podkhody k diagnostike i lecheniyu /
Ye.S. Kas’yan // Slovo o zdorov’ye. – 2017. – № 11. – S. 35-40.
2. Makogon N.V. Polн(ADF-ribozo) polнmeraza 1: fнzнologнchna ta patofнzнologнchna rol’ / N.V. Makogon, Н.M. Alekseyeva //
Fнzнologнchniy zhurnal – 2012. – T. 58, № 3. – S. 95-112.
3. Srнbna V.O. Odnonitkovнrozrivi DNK yader klнtin folнkulyarnogo otochennya ootsitнv, timusa нlнmfatichnikh vuzlнv za umov
yeksperimental’nogo нmunnogo ushkodzhennya ta zastosuvannya antioksidanta / V.O. Srнbna, N.G. Grushka, R.Н. Yanchнy //
Vнsnik problem bнologнн̈ нmeditsini. – 2016. – № 2, tom 3 (130). – S. 195-199.
4. Funktsional’noye sostoyaniye yaichnika, matki, timusa i limfaticheskikh uzlov u myshey s eksperimental’nym immunokompleksnym
povrezhdeniyem v usloviyakh vvedeniya substantsii nanochastits nol’-valentnogo zheleza / V.A. Sribnaya, A.P. Litvinenko,
L.S. Reznichenko [ta нn.] // Problemy reproduktsii. – 2016. – № 22 (4). – S. 20-27.
5. A review on PARP1 inhibitors: Pharmacophore modeling, virtual and biological screening studies to identify novel PARP1 inhibitors
/ S. Singh, J. Sarma, L. Narasu [et al.] // Curr Top Med Chem. – 2014. – № 14 (17).– Р. 2020-2030.
6. Autoantibodies to heat-shock protein, HSPA5, and epitope spreading: high-dose dexamethasone therapy rescues ovarian func
tion in experimental autoimmune ovarian insufficiency mouse model / K. Kadam, P. Mande, N. Gawas [et al.] // Am J Reprod Im
munol. – 2016. – № 75 (5).– P. 580-593.
7. Autoimmune polyglandular syndrome type 3 (APS-3) among patients with premature ovarian insufficiency (POI) / K. Szlendak
Sauer, D. Jakubik, M. Kunicki [et al.] // Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. – 2016. – № 203.– P. 61-65.
8. Autoimmune primary ovarian insufficiency / C. Silva, L. Yamakami, N. Aikawa [et al.] // Autoimmun Rev. – 2014. – № 13 (4-5). –
P. 427-430.
9. Assessment of 1,2-propanediol (PrOH) genotoxicity on mouse oocytes by comet assay / A. Berthelot-Ricou, J. Perrin, C. di Gior
gio [et al.] // Fertil Steril. – 2011. – Vol. 96. – Р. 1002-1007.
10. Bukovsky A. Immunoregulation of follicular renewal, selection, POF, and menopause in vivo, vs. neo-oogenesis in vitro, POF and
ovarian infertility treatment, and a clinical trial / A. Bukovsky, M. Caudle // Reprod Biol Endocrinol. – 2012. – № 10.– P. 97-112.
11. Growth hormone treatment of premature ovarian failure in a mouse model via stimulation of the Notch-1 signaling pathway / T. Liu,
S. Wang, L. Zhang [et al.] // Exp Ther Med. – 2016. – № 12 (1).– P. 215-221.
12. Hydrogen-rich Water Exerting a Protective Effect on Ovarian Reserve Function in a Mouse Model of Immune Premature Ovarian
Failure Induced by Zona Pellucida3 / X. He, S. Wang, C. Yin [et al.] // Chin Med J. – 2016. – № 129 (19).– P. 2331-2337.
13. Psychosocial vulnerability, resilience resources, and coping with infertility: a longitudinal model of adjustment to primary ovarian
insufficiency / M. Driscoll, M. Davis, L. Aiken [et al.] // Ann Behav Med. – 2016. – № 50 (2).– P. 272-284.
14. Resveratrol during in vitro maturation improves the quality of bovine oocyte and enhances embryonic development in vitro / V. Tor
res, L. Muсoz, R. Urrego, [et al.] // Reprod Fertil Dev. – 2016. – № 29 (1).– P. 199-203.
15. Resveratrol protects mouse oocytes from methylglyoxal-induced oxidative damage / Y. Liu, X. He, X. Huang [et al.] // PLoS One.
– 2013. – № 8 (10).– P. 779-806.
16. Resveratrol-induced mitochondrial synthesis and autophagy in oocytes derived from early antral follicles of aged cows / M. Sugi
yama, R. Kawahara-Miki, H. Kawana [et al.] // J Reprod Dev. – 2015. – № 61 (4).– P. 251-259.
17. Veith S. RecQ helicases and PARP1 team up in maintaining genome integrity / S. Veith, A. Mangerich // Ageing Res Rev. – 2015.
– № 23 (A).– P. 12-28.

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 4 Том 3 (141), 2017 год, 231-234 страницы, код УДК 616-092:618.112:618.112:616-092.4

10.29254/2077–4214–2017–4–3–141–231-234