Бубало Н. Н., Балан Г. М., Жминько П. Г., Проданчук Н. Г., Кравчук А. П., Рашковская И. А., Усенко Т. В., Бубало В. А., Колянчук Я. В., Колесник С. Д., Петрошенко А. И.

ЛЕПТИН, КАК БИОМАРКЕР МЕТАБОЛИЧЕСКИХ НАРУШЕНИЙ И ОЖИРЕНИЯ У БОЛЬНЫХ, ПЕРЕНEСШИХ ОСТРЫЕ ОТРАВЛЕНИЯ ГЕРБИЦИДОМ НА ОСНОВЕ 2,4-ДИХЛОРФЕНОКСИОЦТОВОЙ КИСЛОТЫ


Об авторе:

Бубало Н. Н., Балан Г. М., Жминько П. Г., Проданчук Н. Г., Кравчук А. П., Рашковская И. А., Усенко Т. В., Бубало В. А., Колянчук Я. В., Колесник С. Д., Петрошенко А. И.

Рубрика:

КЛИНИЧЕСКАЯ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА

Тип статьи:

Научная статья.

Аннотация:

Метаболический синдром и ожирение – это патологические состояния, широко распространенные в мире. Известно, что некоторые пестициды повышают риск развития метаболических нарушений и ожирения. Целью данного исследования было изучить содержание лептина в сыворотке крови у 23 больных, перенесших острые отравления гербицидом на основе 2,4-Д в отдаленном периоде после отравления в зависимости от трофологического статуса и определить его диагностическую и прогностическую значимость. У больных исследовали содержание лептина в сыворотке, уровень липопротеинов, а также трофологический статус (окружность талии, индекс массы тела). Было установлено, что у лиц перенесших острые отравления 2,4-Д с развитием в отдаленном периоде гепатостеатоза и ожирения, его содержание было почти в 2,5 раза выше, чем у лиц группы сравнения (р <0,05) и больных, перенесших отравление 2,4-Д без поражения печени и без признаков гепатостеатоза (р <0,05). Проведенные исследования показывают, что оценка уровня лептина может быть использована в качестве биомаркера метаболических нарушений, которые обусловлены влиянием пестицидов-обезогенов.

Ключевые слова:

лептин, ожирение, метаболический синдром, пестициды, отравление.

Список цитируемой литературы:

  1. Grundy SM, Brewer HB, Cleeman JI, Smith SC, Lenfant C. Definition of metabolic syndrome: report of the National Heart, Lung, and Blood Institute/American Heart Association conference on scientific issues related to definition. Circulation. 2004;109(3):433-8. DOI: 10.1161/01. CIR.0000111245.75752.C6
  2. Aguilar M, Bhuket T, Torres S, Liu B, Wong RJ. Prevalence of the metabolic syndrome in the United States, 2003-2012. Jama. 2015;313(19):1973- 4. DOI: 10.1001/jama.2015.4260
  3. Vandenberg LN, Colborn T, Hayes TB, Heindel JJ, Jacobs DR, Lee DH, et al. Hormones and endocrine-disrupting chemicals: low-dose effects and nonmonotonic dose responses. Endocrine reviews. 2012;33(3):378-455. Available from: https://doi.org/10.1210/er.2011-1050
  4. Heindel JJ, Blumberg B, Cave M, Machtinger R, Mantovani A, Mendez MA, et al. Metabolism disrupting chemicals and metabolic disorders. Reproductive toxicology. 2017;68:3-33. DOI: 10.1016/j.reprotox.2016.10.001
  5. Beausoleil C, Ormsby JN, Gies A, Hass U, Heindel JJ, Holmer ML, et al. Low dose effects and non-monotonic dose responses for endocrine active chemicals: science to practice workshop: workshop summary. Chemosphere. 2013;93(6):847-56. Available from: https://doi.org/10.1016/j. chemosphere.2013.06.043
  6. Lee DH, Porta M, Jacobs DR, Vandenberg LN. Chlorinated persistent organic pollutants, obesity, and type 2 diabetes. Endocrine reviews. 2014;35(4):557-601. DOI: 10.1210/er.9013-1084
  7. Baillie-Hamilton PF. Chemical toxins: a hypothesis to explain the global obesity epidemic. The Journal of Alternative & Complementary Medicine. 2002;8(2):185-92. DOI: 10.1089/107555302317371479
  8. Grun F. Obesogens. Current opinion in endocrinology, diabetes and obesity. 2010;17(5):453-9. DOI: 10.1097/MED.0b013e32833ddea0
  9.  Xiao X, Sun Q, Kim Y, Yang SH, Qi W, Kim D, et al. Exposure to permethrin promotes high fat diet-induced weight gain and insulin resistance in male C57BL/6J mice. Food and chemical toxicology. 2018;111:405-16. DOI: 10.1016/j.fct.2017.11.047
  10. Tayeb W, Nakbi A, Cheraief I, Miled A, Hammami M. Alteration of lipid status and lipid metabolism, induction of oxidative stress and lipid peroxidation by 2, 4-dichlorophenoxyacetic herbicide in rat liver. Toxicology mechanisms and methods. 2013;23(6):449-58. DOI: 10.3109/15376516.2013.780275
  11. Lim S, Ahn SY, Song IC, Chung MH, Jang HC, Park KS, et al. Chronic exposure to the herbicide, atrazine, causes mitochondrial dysfunction and insulin resistance. PloS one. 2009;4(4):e5186. DOI: 10.1371/journal.pone.0005186
  12. Karmanova DS, Chesnikova LA, Kasirov SI. Vliianie netoksichnyh doz gerbicida 2,4-D na dinamiku massy tela jyvotnyh v eksperimente. Orenbujskii medicinskii vesnik. 2015;3:203-6. [in Russian].
  13. Blüher M, Mantzoros CS. From leptin to other adipokines in health and disease: facts and expectations at the beginning of the 21st century. Metabolism. 2015;64(1):131-45. Available from: https://doi.org/10.1016/j.metabol.2014.10.016
  14. Fietta P, Delsante G. Focus on adipokines. In Theoretical biology forum. 2013;1-2:103-29.
  15. McMillen IC, Edwards LJ, Duffield J, Muhlhausler BS. Regulation of leptin synthesis and secretion before birth: implications for the early programming of adult obesity. Reproduction. 2006;131(3):415-27. Available from: https://doi.org/10.1530/rep.1.00303
  16. Shimizu H, OH S, Okada S, Mori M. Leptin resistance and obesity. Endocrine journal. 2007;54(1):17-26. Available from: https://doi.org/10.1507/ endocrj.KR-85
  17.  Antuna-Puente B, Feve B, Fellahi S, Bastard JP. Adipokines: the missing link between insulin resistance and obesity. Diabetes & metabolism. 2008;34(1):2-11. Available from: https://doi.org/10.1016/j.diabet.2007.09.004
  18. Blüher M. Adipose tissue dysfunction in obesity. Experimental and Clinical Endocrinology & Diabetes. 2009;117(06):241-50. DOI: 10.1055/s0029-1192044
  19. Ghantous CM, Azrak Z, Hanache S, Abou-Kheir W, Zeidan A. Differential role of leptin and adiponectin in cardiovascular system. International journal of endocrinology [Internet]. 2015:534320. Available from: http://dx.doi.org/10.1155/2015/534320
  20. Laubner K, Kieffer TJ, Lam NT, Niu X, Jakob F, Seufert J. Inhibition of preproinsulin gene expression by leptin induction of suppressor of cytokine signaling 3 in pancreatic β-cells. Diabetes. 2005;12:3410-7. Available from: https://doi.org/10.2337/diabetes.54.12.3410
  21. Howell IIIG, Mangum L. Exposure to bioaccumulative organochlorine compounds alters adipogenesis, fatty acid uptake, and adipokine production in NIH3T3-L1 cells. Toxicology in Vitro. 2011;25(1):394-402. Available from: https://doi.org/10.1016/j.tiv.2010.10.015
  22. Svingen T, Ramhøj L, Mandrup K, Christiansen S, Axelstad M, Vinggaard AM, et al. Effects on metabolic parameters in young rats born with low birth weight after exposure to a mixture of pesticides. Scientific reports. 2018;8(1):305. Available from: https://doi.org/10.1038/s41598- 017-18626-x
  23. Sasso M, Beaugrand M, De Ledinghen V, Douvin C, Marcellin P, Poupon R. Controlled attenuation parameter (CAP): a novel VCTE™ guided ultrasonic attenuation measurement for the evaluation of hepatic steatosis: preliminary study and validation in a cohort of patients with chronic liver disease from various causes. Ultrasound in medicine & biology. 2010;36(11):1825-35. Available from: https://doi.org/10.1016/j. ultrasmedbio.2010.07.005

Публикация статьи:

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 3 (152), 2019 год, 84-88 страницы, код УДК 612.018:616-008.9:613.25:615.9.

DOI: