Вплив лікувальних препаратів бактеріофагів на біоплівки STAPHYLOCOCCUS AUREUS

Воробєй Є. С., Воронкова О. С., Вінніков А. І., Коваленко С. М., Шматко Г. П.

МІКРОБІОЛОГІЯ

Наукова стаття

В результаті вивчення 12 штамів Staphylococcus aureus, виділених з репродуктивного трак-ту жінок, було визначено їх здатність формувати біоплівки, чутливість до комерційних препаратів бактері-офагів та вплив фагів на процес плівкоутворення, який вивчали за величиною оптичної густини біоплівки. Встановлено, що при внесенні фагових препаратів підчас засіву показник оптичної густини через 24 години після внесення фага зменшувався до 80,05±3,32% порівняно з контролем без внесення фага (100%). При внесенні фагів на добову, 48- та 72-годинну біоплівку спостерігалося значно більше зменшення оптичної густини: до 57,3±5,74%, 55,13±3,9% та 63,1±6,23% відповідно. Тобто, наведені дані свідчать про здатність фагових препаратів інгібувати формування біоплівки умовно-патогенними стафілококами.

стафілококи, плівкоутворення, мікробні біоплівки, бактеріофаги, регуляція росту біоплівки

• 1. Определитель бактерий Берджи в 2-х тт: пер. с англ. / Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крига, П. Снита, Дж. Стейли, С. Уил-льямса. – Москва: Мир, 1997. – Т. 2. – 368 с.
• 2. Практическое руководство по антиинфекционной химиотерапии / Под ред. Л. С. Страчунского, ю. Б. Белоусова, С. Н. Козлова. – Смоленск: МАКМАХ, 2007. – 464 с.
• 3. Руководство по медицинской микробиологии. Общая и санитарная микробиология. – Кн. 1 / Колл. авторов / Под ред. А. С. Лабинской, Е. Г. Волиной. – М: БИНОМ, 2008. – 1080с.
• 4. Adams M. H. An enzyme produced by a phage-host cell system II. The properties of the polysaccharide depolymerase / M. H. Adams, B. H. Park // Virology. – 1956. – Vol. 2. – P. 719-736.
• 5. Agarwal A. Medical significance and management of staphylococcal biofilm / A. Agarwal, K. P. Singh, A. Jain // FEMS Immunol. Med. Microbiol. – 2010. – Vol. 58, №2. – P. 147-160.
• 6. Azeredo J. The use of phages for the removal of infectious biofilms / J. Azeredo, I. W. Sutherland // Current Pharmaceutical Biorecilmotogy. – 2008. – Vol. 9. – P. 261-266.
• 7. Brady R. A. Osteomyelitis and the role of biofilm in chronic infection FEMS / R. A. Brady, J. G. Leid, J. H. Calhoun [et al.] // Immunol. Med. Microbiol. – 2008. – Vol. 52. – P. 13-22.
• 8. Damborg P. Structural variations of staphylococcal cassette chromosome mec type IVa in Staphylococcus aureus clonal complex 8 and unrelated lineages / P. Damborg, M. D. Bartels, K. Boye [et al.] // Antimicrob. Agents Chemother. – 2011. – Vol. 55(8). – P. 3932-3935.
• 9. Davies J. C. Bugs, biofilms, and resistance in cystic fibrosis / J. C. Davies, D. Bilton // Respir Care. – 2009. – Vol. 54. – P. 628-640.
• 10. Doolittle M. M. Tracing the interaction of bacteriophage with bacterial biofilms using fluorescent and chromogenic probes / M. M. Doolittle, J. J. Cooney, D. E. Caldwell // J. Ind. Microbiol. – 1996. – Vol. 16. – P. 331–341.
• 11. Garau J. Management of methicillin-resistant Staphylococcus aureus infections / J. Garau, E. Bouza, J. Chastre [et al.] // Clinical microbiology and infection. – 2009. – Vol. 15, №2. – P. 125-136.
• 12. Gilbert P. Biofilms in vitro and in vivo: do singular mechanisms imply cross resistance? / P. Gilbert, D. G. Allison, A. J. McBain// Journal of Applied Microbiology. – 2002. – Vol. 92. – P. 98-110.
• 13. Hall-Stoodley L. Evolving concepts in biofilm infections / L. Hall-Stoodley, P. Stoodley // Cellular Microbiology. – 2009. – Vol. 11. – P. 1034-1043.
• 14. Izano E. A. Differential roles of Poly-N-acetylglucosamine surface polysaccharide and extracellular DNA in Staphylococcus aureus and Staphylococcus epidermidis biofilms / E. A. Izano, M. A. Amarante, W. B. Kher [et al.] // Applied and Environmental Microbiology. – 2008. – Vol. 74, №2. – P. 470-476.
• 15. Jain A. Biofilm production, a marker of pathogenic potential of colonizing and commensal staphylococci / A. Jain, A. Agarwal// J. Microbiol. Methods. – 2009. – Vol. 76, №1. – P. 88–92.
• 16. Joly-Guillou M. L. Clinical impact and pathogenicity of Acinetobacter / M. L. Joly-Guillou // Clin. Microbiol. Infect. – 2005. – Vol. 11. – P. 868–873.
• 17. Lindberg A. A. Bacterial surface carbohydrates and bacteriophage adsorption / A. A. Lindberg // Surface Carbohydrates of the Prokaryotic Cell / ed. I. W. Sutherland. – London: Academic Press, 1977. – P. 289–356.
• 18. Mack D. Mechanisms of biofilm formation in Staphylococcus epidermidis and Staphylococcus aureus: functional molecules, regulatory circuits, and adaptive responses / D. Mack, P. Becker, I. Chatterjeec [et. al.] // International Journal of Medical Microbiology. – 2004. – Vol. 294. – P. 203–212.
• 19. Otto M. Staphylococcal biofilms / M. Otto // Curr. Top. Microbiol. Immunol. – 2008. – Vol. 322. – P. 207-228.
• 20. Scholl D. Polysaccharide-degrading phages / D. School, C. Merril // Phages: Their Role in Bacterial Pathogenesis and Biotechnology / eds. M. K. Waldor, D. I. Friedman, S. L. Adhy. – Washington DC: ASM Press, 2005. – P. 400-414.
• 21. Sutherland I. W. The interaction of phage and biofilms / I. W. Sutherland, K. A. Hughes, L. C. Skillman [et al] // FEMS Microbiology Letters. – 2004. – Vol. 232. – P. 1–6.
• 22. Taj y. Study on biofilm-forming properties of clinical isolates of Staphylococcus aureus / y. Taj, F. Essa, F. Aziz [et. al.] // J. Infect. Dev. Ctries. – 2012. – Vol. 6, №5. – P. 403–409.
• 23. Vergara-Irigaray M. Wall teichoic acids are dispensable for anchoring the PNAG exopolysaccharide to the Staphylococcus aureus cell surface / M. Vergara-Irigaray, T. Maira-Litran, N. Merino [et. al.] // Microbiology. – 2008. – №154, №3. – P. 865-877.

«Вістник проблем біології і медицини» Випуск 2 Том 3 (109), 2014 рік , 223-229 сторінки, код УДК 615. 371:578. 7