ПРИМЕНЕНИЕ БИОПОЛИМЕРОВ ПРИ КРИОКОНСЕРВИРОВАНИИ ТЕСТИКУЛЯРНОЙ ТКАНИ КРЫС
Об авторе:
Волкова Н. А., Юхта М. С., Чернышенко Л. Г., Степанюк Л. В., Сокол Л. В., Гольцев А. Н.
Рубрика:
БИОЛОГИЯ
Тип статьи:
Научная статья.
Аннотация:
Целью работы было определение влияния коллагенового (КГ) и фибринового (ФГ) гелей на морфофункциональные характеристики фрагментов извитых канальцев семенников неполовозрелых крыс в условиях программного замораживания. Установлено, что криоконсервирование фрагментов семенных канальцев под защитой криозащитной среды на основе ФГ позволяет сохранить их гистоструктуру и метаболическую активность и есть более результативным, чем применение раствора Хэнкса с БСА. По результатам гистологического исследования ФГ с 5% ДМСО (в отличие от КГ) уменьшал выраженность явлений десквамации и ретракции сперматогенных клеток, а также количество клеток с пикнотичными ядрами. Похожая тенденция наблюдалась и при исследовании метаболической активности (МТТ-тест) и активности ЛДГ в клетках извитых канальцев после криоконсервирования. Полученные данные могут быть использованы для обоснования и разработки эффективных методик криоконсервирования извитых канальцев семенников с использованием биополимерных гелей для создания криобанков незрелой тестикулярной ткани.
Ключевые слова:
тестикулярная ткань, неполовозрелые крысы, диметилсульфоксид, криоконсервирование, бычий сывороточный альбумин, коллагеновый гель, фибриновый гель.
Список цитируемой литературы:
- Lima D, Silva T, Morais GB, Aquino-Cortez A, Evangelista J, Xavier Junior F, et al. Different associations of cryoprotectants for testicular tissue of prepubertal cats submitted to vitrification. Reprod Domest Anim. 2017;52(2):235-41.
- Yokonishi T, Sato T, Komeya M, Katagiri K, Kubota Y, Nakabayashi K, et al. Offspring production with sperm grown in vitro from cryopreserved testis tissues. Nat Commun. 2014;5:4320.
- Suzuki N, Donnez J, editors. Gonadal Tissue Cryopreservation in Fertility Preservation. Springer Japan; 2016. 192 p.
- Кeros V, Hultenby K, Borgstrоm B, Fridstrоm M, Jahnukainen K, Hovatta O. Methods of cryopreservation of testicular tissue with viable spermatogonia in pre‐pubertal boys undergoing gonadotoxic cancer treatment. Hum Reprod. 2007;22:1384-95.
- Keros V, Rosenlund B, Hultenby K, Aghajanova L, Levkov L, Hovatta O. Optimizing cryopreservation of human testicular tissue: comparison of protocols with glycerol, propanediol and dimethylsulphoxide as cryoprotectants. Hum Reprod. 2005;20:1676-87.
- Jahnukainen K, Ehmcke J, Hergenrother SD, Schlatt S. Effect of cold storage and cryopreservation of immature nonhuman primate testicular tissue on spermatogonial stem cell potential in xenografts. Hum Reprod. 2007;22:1060-7.
- Ohta H, Wakayama T. Generation of normal progeny by intracytoplasmic sperm injection following grafting of testicular tissue from cloned mice that died postnatally. Biol Reprod. 2005;73(3):390-5.
- Volkova NO, Yukhta MS, Chernyshenko LG, Stepanyuk LV, Sokol LV, Goltsev AM. Exposure of seminiferous tubules of immature rats to cryoprotective media of various compositions. Probl Cryobiol Cryomed. 2017;27(3):203-18.
- Volkova N, Yukhta M, Goltsev A. Biopolymer gels as a basis of cryoprotective medium for testicular tissue of rats. Cell and tissue banking. 2018;19(4):819-26.
- Chandrakasan G, Torchia DA, Piez KA. Preparation of intact monomeric collagen from rat tail tendon and skin and the structure of the nonhelical ends in solution. J Biol Chem. 1976;251:6062-7.
- Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983;65(1-2):55-63.
Публикация статьи:
«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 1 Том 2 (149), 2019 год, 67-70 страницы, код УДК 612.617.1:615.014.41:539.21-022.532