ИССЛЕДОВАНИЕ ЭФФЕКТИВНОСТИ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ МАГНИЯ СУЛЬФАТА В СОСТАВЕ ЖИДКОСТНОЙ РЕСУСЦИТАЦИИ НА ПОВРЕЖДЕНИЯ КЛЕТОЧНЫХ МЕМБРАН У ПОСТРАДАВШИХ С ПОЛИТРАВМОЙ В УСЛОВИЯХ ГИПОВОЛЕМИЧЕСКОГО ТРАВМАТИЧЕСКОГО ШОКА И ИШЕМИИ / РЕПЕРФУЗИИ

Белецкий А. В., Ступницкий М. А.

КЛИНИЧЕСКАЯ И ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ МЕДИЦИНА

Научная статья.

У 24 пациентов в состоянии травматического шока на фоне политравмы изучали эффективность противошоковой жидкостной ресусцитации на раннем госпитальном этапе. Проводилось сравнительное изучение влияния интенсивной терапии, рекомендованной Протоколами Приказов Министерства здравоохранения Украины, и при добавлении к ней гипертонического раствора магния сульфата в физиологическом растворе. Применение магния сульфата обоснованно ускорением восстановления объема циркулирующей крови с одновременным устранением тахикардии и улучшением механики сердечных сокращений, а также уменьшением клеточных мембранных повреждений за счет ограничения поступления в них ионизированного кальция с последующим уменьшением интенсивности процессов свободнорадикального окисления. Сформированы две группы исследования по 12 пациентов в каждой группе: основная ‑ использованием инфузии магния сульфата и контрольная ‑ с проведением «стандартной» ресусцитации. Изучались изменения показателей центральной и периферической гемодинамики на этапах оказания помощи, содержание в крови карбоксилированного гемоглобина и малонового диальдегида. Выявлено, что применение в составе жидкостной ресусцитации магния сульфата способствовало достоверному ускорению улучшения показателей центральной и периферической гемодинамики, а также уменьшению продукции в организме карбоксилированного гемоглобина и малонового диальдегида в первые 24 часа после хирургической операции.

травматический шок, ишемия / реперфузия, жидкостная ресусцитация, гемодинамика, свободнорадикальные повреждения, магния сульфат, монооксид углерода, малоновый диальдегид.

1. Cannon JW. Hemorrhagic Shock. New England Journal of Medicine. 2018 Jan 25;378(4):370-9. Available from: http://www.nejm.org/doi/ pdf/10.1056/NEJMra1705649
2.  Kang WS, Yeom JW, Jo YG, Kim JC. Pathophysiology of Hemorrhagic Shock. Journal of Acute Care Surgery. 2016 Apr;6(1):2-6. Available from: https://doi.org/10.17479/jacs.2016.6.1.2 [in Korean].
3.  Premaratne S, Amaratunga DT, Mensah FE, McNamara JJ. Significance of Oxygen Free Radicals in the Pathophysiology of Hemorrhagic Shock – A Protocol. International Journal of Surgery Protocols. 2018;9:15-9. Available from: https://www.ijsprotocols.com/article/S2468- 3574(17)30036-0/pdf
4. Nakayama H, Otsu K. Mitochondrial DNA as an Inflammatory Mediator in Cardiovascular Diseases. Biochemical Journal. 2018 Mar 6;475:839- 52. Available from: https://doi.org/10.1042/BCJ20170714
5.  Wenceslau CF, McCarthy CG, Szasz T, Goulopoulou S, Webb RC. Mitochondrial N-Formyl Peptides Induce Cardiovascular Collapse and Sepsis-Like Syndrome. American Journal of Physiology: Heart & Circulation Physiology. 2015 Apr 01;308(7):H768-77. DOI: 10.1152/ajpheart.00779.2014
6.  Wenceslau CF, McCarthy CG, Goulopoulou S, Szasz T, NeSmith EG, Webb RC. Mitochondrial-Derived N-Formyl Peptides: Novel Links between Trauma, Vascular Collapse and Sepsis. Medical Hypotheses. 2013 Oct;81(4):532-5. DOI: 10.1016/j.mehy.2013.06.026
7.  Zhang Q, Raoof M, Chen Yu, Sumi Yu, Sursal T, Junger W, et al. Circulating Mitochondrial DAMPs Cause Inflammatory Responses to Injury. Nature. 2010 Mar 04;464(7285):104-7. DOI: 10.1038/nature08780
8. Muntean DM, Sturza A, Danila MD, Borza C, Diucu OM, Mornos C. The Role of Mitochondrial Reactive Oxygen Species in Cardiovascular Injury and Protective Strategies. Hindawi: Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2016. 2016: Article ID 8254942. Available from: http://dx.doi. org/10.1155/2016/8254942
9.  Li X, Fang P, Mai J, Choi ET, Wang H, Feng X. Targeting Mitochondrial Reactive Oxygen Species as Novel Therapy for Inflammatory Diseases and Cancers. Journal of Hematology & Oncology. 2013;6:19. Available from: https://doi.org/10.1186/1756-8722-6-19
10.  Schwalfenberg GK, Genuis SJ. The Importance of Magnesium in Clinical Healthcare. Hindawi: Scientifica. 2017. 2017: Article ID 4179326. Available from: https://doi.org/10.1155/2017/4179326
11.  Sampaio FA, Feitosa MM, Sales CH, Costa e Silva DM, Clímaco Cruz KJ, Oliveira FE, et al. Influence of Magnesium on Biochemical Parameters of Iron and Oxidative Stress in Patients with Type 2 Diabetes. Nutricion Hospitalaria. 2014;30(3):570-6. DOI: 10.3305/nh.2014.30.3.7333
12. Günther T. Na+/Mg2+Antiport in Non-Erythrocyte Vertebrate Cells. Magnesium Research. 2007;20(2):89-99. DOI: 10.1684/mrh.2007.0100
13. Biletskiy OV, Kursov SV. Zastosuvannya magniyu sulfatu z metoyu priskorennya vivedennya postrazhdalih iz stanu gipovolemichnogo travmatichnogo shoku v umovah reanimatsiynoyi zali ta operatsiynoyi. Bil, znebolyuvannya ta intensivna terapiya. 2018;3(84):30-5. [in Ukrainian].
14. Hu T, Xu H, Wang Ch, Qin H, An Z. Magnesium Enhances the Chondrogenic Differentiation of Mesenchymal Stem Cells by Inhibiting Activated Macrophage-Induced Inflammation. Scientific Reports. 2018;8:3406. DOI: 10.1038/s41598-018-21783-2
15.  Abad С, Vargas FR, Zoltan T, Proverbio T, Pinero S, Proverbio F, et al. Magnesium Sulfate Affords Protection against Oxidative Damage during Severe Preeclampsia. Placenta. 2015;36:179-85. Available from: http://dx.doi.org/10.1016/j.placenta.2014.11.008
16.  Muroi C, Burkhardt JK, Hugelshofer M, Seule M, Mishima K, Keller E. Magnesium and the Inflammatory Response: Potential Pathophysiological Implications in the Management of Patients with Aneurysmal Subarachnoid Hemorrhage? Magnesium Research. 2012;25(2):64-71. DOI: 10.1684/mrh.2012.0314
17.  Beletskiy AV. Giperproduktsiya karboksigemoglobina kak sledstvie gipoksii i membrannyih povrezhdeniy. Harkivska hirurgichna shkola. 2016;6(81):89-92. Available from: http://nbuv.gov.ua/UJRN/Khkhsh_2016_6_21 [in Russian].
18. Kursov SV. Monooksid ugleroda: fiziologicheskoe znachenie i toksikologiya. Meditsina nevidkladnih staniv. 2015;6(69):9-16. [in Russian].
19. Wu L, Wang R. Carbon Monoxide: Endogenous Production, Physiological Functions, and Pharmacological Applications. Pharmacological Reviews. 2005;57(4):585-630.
20. Bouboulis G, Bonatsos VG, Katsarou AI, Karameris A, Galanos A, Zacharioudaki A, et al. Experimental Hemorrhagic Shock Protocol in Swine Models: The Effects of 21-Aminosteroid on the Small Intestine. Current Therapeutic Research. 2018;88(1):18-25. Available from: https://doi. org/10.1016/j.curtheres.2018.03.003
21. Yang J, Yin HS, Cao YJ, Jiang ZA, Li YJ, Song MC, et al. Arctigenin Attenuates Ischemia/Reperfusion Induced Ventricular Arrhythmias by Decreasing Oxidative Stress in Rats. Cellular Physiology & Biochemistry. 2018;49(2):728-42. Available from: https://doi.org/10.1159/000493038
22.  Chen G, You G, Wang Y, Lu M, Cheng W, Yang J, et al. Effects of Synthetic Colloids on Oxidative Stress and Inflammatory Response in Hemorrhagic Shock: Comparison of Hydroxyethyl Starch 130/0.4, Hydroxyethyl Starch 200/0.5, and Succinylated Gelatin. Critical Care. 2013 Jul 12;17(4):R141. DOI: 10.1186/cc12820
23. Kondrahin IP. Opredelenie malonovogo dialdegida v krovi; Biologiya. Klinicheskaya i laboratornaya diagnostika [Internet] Myzooplanet.ru [2004]. Available from: http://myzooplanet.ru/laboratornaya-diagnostika-klinicheskaya/opredelenie-malonovogo-dialdepscha-9430.html [in Russian].
24. Kursov SV, Nikonov VV, Beletskiy AV, Lizogub KI. Kolichestvennyie izmeneniya perfuzionnogo indeksa pri razlichnyih patologicheskih sostoyaniyah. Meditsina nevidkladnih staniv. 2018;1(88):99-102. [in Russian].
25. Ertan T, Soran A, Kocer B, Cengiz O. Oxidative Stress in Hemorrhagic Shock: Prospective Clinical Study. Nagoya Medical Journal. 2001;45:43-54.

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 1 Том 2 (149), 2019 год, 120-125 страницы, код УДК 616-001.36-005.1/4-008.7-03-06-08-092.6/18-098

10.29254/2077-4214-2019-1-2-149-120-125