• Главная
  • Полезные ссылки
  • О журнале
  • Авторам
  • Редакционная коллегия

    •
    Вестник проблем биологии и медицины / Выпуск 2 (144), 2018 / ГИСТОТОПОГРАФИЯ РЕЦЕПТОРОВ ЛЕКТИНА ЗАРОДЫШЕЙ ПШЕНИЦЫ В ДИНАМИКЕ ПОСТНАТАЛЬНОГО МОРФОГЕНЕЗА НАДПОЧЕЧНИКА КРЫСЫ В НОРМЕ И В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ГИПО- И ГИПЕРТИРОЗА МАТЕРИНСКОГО ОРГАНИЗМА

    Луцик С. А., Ященко А. М.

    ГИСТОТОПОГРАФИЯ РЕЦЕПТОРОВ ЛЕКТИНА ЗАРОДЫШЕЙ ПШЕНИЦЫ В ДИНАМИКЕ ПОСТНАТАЛЬНОГО МОРФОГЕНЕЗА НАДПОЧЕЧНИКА КРЫСЫ В НОРМЕ И В УСЛОВИЯХ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОГО ГИПО- И ГИПЕРТИРОЗА МАТЕРИНСКОГО ОРГАНИЗМА

    Об авторе:

    Луцик С. А., Ященко А. М.

    Рубрика:

    МОРФОЛОГИЯ

    Тип статьи:

    Научная статья.

    Аннотация:

    С использованием лектина зародышей пшеницы исследован морфогенез надпочечников крысы в физиологических условиях и на фоне гипо- и гипертироза материнского организма. Полученные данные позволяют утверждать, что процесс морфогенеза надпочечных желез крысы продолжается после рождения и достоверно завершается к 10-му постнатальному дню. Гипотироз материнского организма обуславливает задержку развития, в то время как гипертироз индуцирует гипертрофию коры надпочечников. В составе мозгового вещества выявлено накопление в процессе постнатального морфогенеза рецепторов лектина WGA (углеводных детерминант DGlcNAc и NeuNAc), что позволяет рекомендовать указанный лектин в качестве селективного гистохимического маркера хромафинных клеток с возможностью дифференцированного выявления эпинефроцитов и норэпинефроцитов.

    Ключевые слова:

    надпочечник крысы, постнатальный морфогенез, гипо- и гипертироз материнского организма, лектиновая гистохимия

    Список цитируемой литературы:

    1. Broulík PD, Marek J, Schreiber V. The effect of experimental hyperthyroidism on renal and adrenal weight increase in mice. Physiol Res. 1991;40(5):527-32.
    2. Detiuk ES, Avgustinovich MS. О morpho-functional’nych osobennostiach nadpochechnych zhelez potomstva ot samok s eksperymental’nym hypotyreosom. Archiv anatomii gistologii i embryologii. 1976;71(10):41-5. [in Russian].
    3. Karaca T, Hulya UZY, Karabacak R, Karaboga I, Demirtas S, Cagatay Cicek A. Effects of hyperthyroidism on expression of vascular endothelial growth factor (VEGF) and apoptosis in fetal adrenal glands. Eur J Histochem. 2015;59(4):258-62. 
    4. Yashchenko A, Lutsyk S. The influence of hypo- and hyperthyroidism on morphogenesis and histophysiology of adrenal glands. J Embryol Stem Cell Res. 2018;2(1):000107.
    5. Moore NA, Callas G. The effects of hyperthyroidism on the fine structure of the zona fasciculata of the rat adrenal cortex. Anat Rec. 1972;174(4):451-67.
    6. Ramirez D, Talesnik J. Role of the adeno-hypophysis in the adrenal hypertrophy of rats with experimental hyperthyroidism. Acta Physiol Lat Am. 1961;11:21-9.
    7. Silva JE, Bianco SD. Thyroid-adrenergic interactions: physiological and clinical implications. Thyroid. 2008;18(2):157-65.
    8. Udoye MO, Nonavinakere VK, Soliman KF. In vivo response of the normal and regenerating adrenal glands to thyroid manipulation in rats. Res Commun Mol Pathol Pharmacol. 1997;95(2):221-4.
    9. Wondisford FE. A direct role for thyroid hormone in development of the adrenal cortex. Endocrinology 2015;156(6):1939-40.
    10. Wuttke H, Kessler FJ, Löbbert G, Vetter H. Effect of experimentally induced hyperthyroidism on zona glomerulosa from adrenal cortex of the rat. Med Klin. 1976;71(6):239-43.
    11. Brooks SA, Dwek MV, Schumacher U. Functional and molecular glycobiology. Oxford, Bios Scientific Publishers; 2002. 268 p.
    12. Dumych T, Yamakawa N, Bilyy R, Bouckaert JMJ. Oligomannose-rich membranes of dying intestinal epithelial cells promote host colonization by adherent-invasive E. coli. Front Microbiol. 2018. DOI: 10.3389/fmicb.2018.00742
    13. Gabius HJ. The sugar code: why glycans are so important. Biosystems. 2018;164:102-11.
    14. Ohtsubo K, Marth JD. Glycosylation in cellular mechanisms of health and disease. Cell. 2006;126:855-67.
    15. Varki A, Cummings RD, Esko JD, Freeze HH, Stanley P, Bertozzi CR, et al. Essentials of glycobiology. 2nd ed. Cold Spring Harbor, Cold Spring Harbor Laboratory Press; 2009. Р. 29-178.
    16. Antoniuk VO. Lectyny ta jich syrovynni dzherela. Lviv: Kvart; 2005. 554 s. [in Ukrainian].
    17. Lutsyk AD, Detiuk ES, Lutsyk MD. Lectiny v gistochimii. Lviv: Vyshcha shkola; 1989. 144 s. [in Russian].
    18. Roth J. Lectins for histochemical demonstration of glycans. Histochem Cell Biol. 2011;136(2):117-30.
    19. Sharon N, Lis H. Lectins. 2nd ed. Dordrecht, Springer; 2007. 464 p.
    20. Voloshyn NA, Grigorieva EA. Lectiny zhyvotnogo i rastitel’nogo proischozhdeniia: rol’ v processach morphogeneza. Zhurnal Academii meditsynskich nauk Ukrainy. Teoreticheskaya Meditsyna. 2005;11(2):223-37. [in Russian].
    21. Bilyy R, Stoika R. Sweet taste of cell death: role of carbohydrate recognition systems. In: Biochemistry and biotechnology for modern medicine. Ed. S. Komisarenko. Kyiv, Moskalenko Publishing House; 2013. р. 615-36.
    22. Haltiwanger RS, Lowe JB. Role of glycosylation in development. Ann Rev Biochem. 2004;73:491-37.
    23. Smolkova O, Zavadka A, Bankston P, Lutsyk A. Cellular heterogeneity of rat vascular endothelium as detected by HPA and GS-I ectin-gold probes. Med Sci Monit. 2001;7(4):659-68.
    24. Parker GA, Picut CA, editors. Atlas of histology of the juvenile rat. Amsterdam: Elsevier-Academic Press; 2016. р. 261-4, 285-91.
    25. Ahi M, Zamansoltani F, Taheri MMH, Bideskan ARE. The role of GalNAc terminal sugar on adrenal gland development. Adv Biol Res. 2007;1(12):34-9.

    Публикация статьи:

    «Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 2 (144), 2018 год, 325-329 страницы, код УДК 612.451-018.1:(616.441-008.64+616.441-008.61):581.162.1-092.4/.9

    DOI:

    10.29254/2077-4214-2018-2-144-325-329