НАРУШЕНИЕ МОРФОГЕНЕЗА СЕРДЦА КРЫС В РАННЕМ ПОСТНАТАЛЬНОМ ПЕРИОДЕ ПОД ВЛИЯНИЕМ АЦЕ- ТАТА СВИНЦА И ПРИ УСЛОВИИ КОРРЕКЦИИ

Довгаль Г. В., Довгаль М. А., Шевченко И. В.

МОРФОЛОГИЯ

Научная статья.

Целью работы было исследовать изменения морфогенеза сердца в условиях экспозиции ацетата свинца и воздействия ликопина и инулина в крыс. Исследования проведены на самках крыс линии Wistar. В целях исследования, животных было разделено на четыре группы: 1 – контрольная группа; 2 – группа с хро- нической экспозицией ацетата свинца; 3 – группа с хронической экспозицией ацетата свинца и добавлением ликопина; 4 – группа с хронической экспозицией ацетата свинца и добавлением инулина. Материалом ис- следования послужили сердца новорожденных крыс (1, 5 и 7 сутки после родов исследуемых самок крыс). Гистологические исследования показали структурные изменения сердца в группах 2, 3 и 4. Во всех группах, которые были в эксперименте с экспозицией ацетата свинца регистрировали морфогенез камер сердца, обо- лочек сердца – эндо, мио и эпикарда. Выявлены изменения экспрессии SMA, MMP-9 и VEGF в миокарде. Нарушение морфогенеза сердца характеризовалось уменьшением экспрессии α-SMA, MMP-9 и VEGF в мио- карде во все сроки раннего постнатального развития и является иммуногистохимическим проявлением по- вреждения кардиомиоцитов и фибробластов. Ликопин и инулин улучшили морфогенез сердца, выявлено на основе увеличения экспрессии α-SMA в группе 3, VEGF в группе 3 и 4 и толщины камер сердца.

постнатальный онтогенез, ацетат свинца, сердце, миокард, ликопин, инулин, желудоч- ки сердца, предсердия сердца, межжелудочковая перегородка, кардиомиоциты, кровеносные сосуды

1. Winiarska-Mieczan A, Krusinski R, Kwiecien M. Tannic Acid influence on lead and cadmium accumulation in the hearts and lungs of rats. Adv Clin Exp Med. 2013 Sep-Oct;22(5):615-20.
2. Sharma S, Thakur A. Biochemical studies on the mice heart regarding lead acetate induced oxidative stress. Int J Pharm Sci Res. 2017;8(3):1388- 92. DOI: 10.13040/IJPSR.0975-8232.8(3).1388-92
3. Patra RC, Rautray AK, Swarup D. Oxidative Stress in Lead and Cadmium Toxicity and Its Amelioration. Veterinary Medicine International. 2011;1:9.
4. Debosree Ghosh, Syed Benazir Firdaus, Elina Mitra, Aindrila Chattopadhyay, Sanjib K. Pattari, Santanu Dutta, et al. Aqueous leaf extract of Murraya koenigii protects against lead-induced cardio toxicity in male wistar rats. International Journal of Phytopharmacology. 2013;4(2):119- 32.
5. Lee UE, Friedman SL. Mechanisms of Hepatic Fibrogenesis. Best Practice & Research. Clinical Gastroenterology. 2011;25(2):195-206. Available from: http://doi.org/10.1016/j.bpg.2011.02.005
6. Zhao T, Zhao W, Chen Y, Ahokas RA, Sun Y. Vascular endothelial growth factor (VEGF)-A: role on cardiac angiogenesis following myocardial infarction. Microvascular Research. 2010;80(2):188-94. Available from: http://doi.org/10.1016/j.mvr.2010.03.014
7. Das KK, Jargar JG, Saha S, Yendigeri SM, Singh SB. А-tocopherol supplementation prevents lead acetate and hypoxia-induced hepatic dysfunction. Indian Journal of Pharmacology. 2015;47(3):285-91. Available from: http://doi.org/10.4103/0253-7613.157126
8. Dovhal HV, Dovhal MA, Romanenko OA. The expression of immunohistochemical markers in the fetal liver after maternal exposure of lead acetate and under the correction. Science Review. 2017;7:17-9.
9. Ema M, Endoh K, Fukushima R. Historical control data on developmental toxicity studies in rodents. Congenital Anomalies. 2014;54:150-61. DOI: 10.1111/cga.12050
10. George L. Kumar, Lars Rudbeck. Immunogistohimicheskie metody: rukovodstvo: DAKO. Per. s angl. pod red. Franka GA, Malkova PG. 2011; 224 s. [in Russiаn].
11. De la Torre NG, Buley I, Wass JA, Turner HE. Angiogenesis and lymphangiogenesis in thyroid proliferative lesions: relationship to type and tumour behaviour. Endocr Relat Cancer. 2006 Sep;13(3):931-44.
12. Barbosa FJr, Sertorio JT, Gerlach RF, Tanus-Santos JE. Clinical evidence for lead-induced inhibition of nitric oxide formation. Arch Toxicol. 2006 Dec;80(12):811-6.
13. Silveira EA, Lizardo JHF, Souza LP, Stefanon I, Vassallo DV. Acute lead-induced vasoconstriction in the vascular beds of isolated perfused rat tails is endothelium-dependent. Braz J Med Biol Res. 2010 May;43(5):492-9. DOI: 10.1590/S0100-879X2010007500027
14. Babu MS, Gopal NV, Reddy KP. Post natal antioxidant enzyme activity of rat brain regions during developmental lead exposure. Environ Biol. 2007;28:21.
15. Cabell L, Ferguson C, Luginbill D, Kern M, Weingart A, Audesirk G. Differential induction of heme oxygenase and other stress proteins in cultured hippocampal astrocytes and neurons by inorganic lead. Toxicol Appl Pharmacol. 2004;198:49-60.
16. Dovgal GV, Shevchenko IV. Ultrastrukturni osnovi kardiotoksichnoyi diyi acetatu svincyu na morfogenez sercya. Vistnik problem biologiyi i medicine. 2018;2(144):306-10. [in Ukrainian].
17. Li N, Li X, Li L, Zhan P, Qiao M, Zhao Q, et al. Original Research. The expression of MMP2 and MMP9 in the hippocampus and cerebral cortex of newborn mice under maternal lead exposure. Experimental Biology and Medicine. 2016;241(16):1811-8. Available from: http://doi. org/10.1177/1535370216647808
18. Liu X, Su P, Meng S, Aschner M, Cao Y, Luo W, et al. Role of matrix metalloproteinase-2/9 (MMP2/9) in lead-induced changes in an in vitro bloodbrain barrier model. International Journal of Biological Sciences. 2017;13(11):1351-60. Available from: http://doi.org/10.7150/ijbs.20670
19. Ghosh D, Mitra E, Firdaus SB, Ghosh AK, Chattopadhyay A, Pattari SK, et al. Melatonin protects against lead-induced cardio toxicity: involvement of antioxidant mechanism. Int J Pharm Pharm Sci. 2013;5(3):806-13.
20. Hossain MA, Bouton CM, Pevsner J, Laterra J. Induction of vascular endothelial growth factor in human astrocytes by lead. Involvement of a protein kinase C/activator protein-1 complex-dependent and hypoxia-inducible factor 1-independent signaling pathway. J Biol Chem. 2000 Sep. 8;275(36):74-82.
21. Barbeito AG, Martinez-Palma L, Vargas MR, Pehar M, Manay N, Beckman JS, et al. Lead exposure stimulates VEGF expression in the spinal cord and extends survival in a mouse model of ALS. Neurobiology of Disease. 2010;37(3):574-80. Available from: http://doi.org/10.1016/j. nbd.2009.11.007
22. Rosano JM, Cheheltani R, Wang B, Vora H, Kiani MF, Crabbe DL. Targeted Delivery of VEGF after a Myocardial Infarction Reduces Collagen Deposition and Improves Cardiac Function. Cardiovasc Eng Technol. 2012 Jun;3(2):237-47.
23. Marwa A, Ahmed and Khaled M, Hassanein A. Cardio protective effects of Nigella sativa oil on lead induced cardio toxicity: anti inflammatory and antioxidant mechanism. J. Physiol. Pathophysiol. December 2013;4(5):72-80.
24. Hernandez-Martinez AR, Molina GA, Jimenez-Hernandez LF, Oskam AH, Fonseca G, Estevez M. Evaluation of Inulin Replacing Chitosan in a Polyurethane/Polysaccharide Material for Pb2+ Removal. Molecules. 2017 Nov;29;22(12). DOI: 10.3390/molecules22122093
25. Usama M, Mahmoud Abdel-Basset M. Ebied, Salwa M. Mohamed. Effect of lead on some haematological and biochemical characteristics of Clarias gariepinus dietary supplemented with lycopene and vitamin E. Egypt. Acad. J. Biolog. Sci. 2013;5(1):67-89.
26. Komousani TA, Moselhy SS. Modulation of lead biohazards using a combination of epicatechin and lycopene in rats. Hum Exp Toxicol. 2011 Oct;30(10):1674-81. DOI: 10.1177/0960327110396536. Epub 2011 Jan 24

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 4 Том 2 (147), 2018 год, 271-276 страницы, код УДК 611:616.12;616.127;611.08

10.29254/2077-4214-2018-4-2-147-271-276