ВПЛИВ ДОНОРІВ ГІДРОГЕНУ СУЛЬФІДУ НА ПОКАЗНИКИ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕСУ ТА СИСТЕМИ НІТРОГЕНУ ОКСИДУ В СЛИЗОВІЙ ОБОЛОНЦІ ТОНКОЇ КИШКИ ЩУРІВ ЗА УМОВ ВВЕДЕННЯ ЕНАЛАПРИЛУ

Склярова Ю. О., Фоменко І. С.

КЛІНІЧНА ТА ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНА МЕДИЦИНА

Наукова стаття

В дослідах на білих лабораторних щурах, яким вводили інгібітор ангіотензинперетворювального ферменту еналаприл в дозі 2 мг/кг досліджували вплив донорів H2S: NaHS у дозах 1 та 10 мг/кг та L-цистеїну (30 мг/кг). З’ясовано, що, введення еналаприлу зумовлювало активацію мієлопероксидази, зростання інтенсивності процесів ліпопероксидації та зниження активності каталази, що разом створює передумови для формування ентропатії. Інгібування ангіотензинперетворювального ферменту призводило до зниження активності конститутивної NO-синтази та аргінази. Введення донорів гідрогену сульфіду NaHS у дозах 1 та 10 мг/кг на тлі дії еналаприлу призводило до зниження активності мієлопероксидази, підвищення активності три конститутивної NO-синтази та аргінази. L-цистеїн знижував концентрацію ТБК-активних продуктів і активність каталази, проте не впливав на активнісь мієлопероксидази Отримані результати свідчать про регуляторний вплив H2S на показники NO-синтазної системи.

ентеропатія, інгібітори АПФ, ліпопероксидація, нітрогену оксид, гідрогену сульфід, слизова оболонки тонкої кишки

1. Sklyarova Y, Fomenko I, Lozynska I, Lozynskyi A, Lesyk R, Sklyarov A. Hydrogen sulfide releasing 2-mercaptoacrylic acid-based derivative possesses cytoprotective activity in a small intestine of rats with medication-induced enteropathy. Sci Pharm. 2017;85(4).
2. McGettigan MJ, Menias СO, Gao ZJ, Mellnick VM. Hara AK. Imaging of drug-induced complications in the gastrointestinal system. Radiographics. 2016;36:71-83.
3. Pusztaszeri MP, Genta RM, Cryer BL. Drug-induced injury in the gastrointestinal tract: Clinical and pathologic considerations. Nat. Clin. Pract. Gastroenterol. Hepatol. 2007;4(8):442-53.
4. Wilin KL, Czupryn MJ, Mui R, Renno A, Murphy JA. ACE Inhibitor-induced angioedema of the small bowel: a case report and review of the literature. J Pharm Pract. 2018;31(1):99-103.
5. Benson BC, Smith C, Laczek JT. Angiotensin converting enzyme inhibitor-induced gastrointestinal angioedema: a case series and literature review. J Clin Gastroenterol. 2013;47(10):844-9.
6. Perlot T, Penninger JM. ACE2 - from the renin-angiotensin system to gut microbiota and malnutrition. Microbes Infect. 2013;15(13):866-73.
7. Aihara E, Kagawa S, Hayashi M, Takeuchi K. ACE inhibitor and AT1 antagonist stimulate duodenal HCO3- secretion mediated by a common pathway - involvement of PG, NO and bradykinin. J Physiol Pharmacol. 2005;56(3):391-406.
8. Sklyarova U, Denysenko N, Ilkiv I, Fomenko I. Tsytoprotektyvna dja donoriv hidrogenu sul’fidu v slyzovij obolontsi tonkoi kyshky za indometatsyn-enteropatij u shchuriv. Eksperimental’na ta klinichna fisiologia ta biohimia. 2017;77(1):38-44. [in Ukrainian].
9. Wang W, Xiao W, Sun L, Zhang C, Chen G, Yang H. Inhibition of ACE activity contributes to the intestinal structural compensation in a massive intestinal resection rat model. Pediatr. Surg. Int. 2012;28:533-54.
10. Timirbulatov RA, Seleznev EI. Metod povyshenia svobodnoradikal’nogo okislenia lipidosoderzhashchih komponentov krovi i ego diagnosticheskoe znachenie. Laboratornoe delo. 1981;4:209-17. [in Russian].
11. Bradley PP, Christensen RD, Rothstein G. Cellular and extracellular myeloperoxidase in pyogenic inflammation. Blood. 1982;60:618-22.
12. Chevari S, Andyal T, Shtrenger Ya. Opredelenie antioksidantnyh parametrov krovi i ih diagnosticheskoe znachenie v pozhylom vozraste. Laboratornoe delo. 1991;10:9-13. [in Russian].
13. Koroluk M, Ivanova L, Mayorova I, Tokorev W. Metod opredelenia aktivnosti katalazy. Laboratornoe delo. 1988;1:16-9. [in Russian].
14. Ravaeva MY, Chuyan EN. Izmemenie aktivnosti sistemy oksida azota pod dejstviem nizkointensivnogo izluchenia. Uchenye Zapiski Tavricheskogo Natsional’nogo Universiteta im VI Vernadskogo Seriya Biologiya Himiya. 2011;24:201-10. [in Russian].
15. Geyer JW, Dabich D. Rapid method for determination of arginase activity in tissue homogenates. Anal. Biochem. 1971:30(2):412-7.
16. Mikrut K, Kupsz J, Kozlik J, Krauss H, Pruszynska-Oszmałek E, Gibas-Dorna M. Angiotensin-converting enzyme inhibitors reduce oxidative stress intensity in hyperglicemic conditions in rats independently from bradykinin receptor inhibitors. Croat Med J. 2016;31;57(4):371-80.
17. Chandran G, Sirajudeen KN, Yusoff NS, Swamy M, Samarendra MS. Effect of the antihypertensive drug enalapril on oxidative stress markers and antioxidant enzymes in kidney of spontaneously hypertensive rat. Oxid Med Cell Longev. 2014;2014:608512.
18. Denysenko N, Fedevych Yu, Sklyarov A. Modeluvannja aktyvnosti NO-syntaznoi systemy hydrogen sulfidom natriu u slysovij obolontsi tovstoj kyshky shchuriv za umov kolity. Visnyk L’vivs’kogo Universytetu. Seria Biologichna. 2016;73:286-91. [in Ukrainian].
19. Sagach VF, Baziljuk OV, Stepanenko LG, Korkach JuP, Kotsuruba AV. Vplyv enalaprylu na syntez oksydu azotu, okysnyj metabolism i tonus sudyn u staryh shchuriv. Fiziologichnyj jurnal. 2007;53(4):15-29. [in Ukrainian].
20. Fomenko I, Sklyarov A, Bondarchuk T, Biletska L, Panasyuk N, Wallace JL. Effects of conventional and hydrogen sulfide-releasing non-steroidal anti-inflammatory drugs in rats with stress-induced and epinephrine-induced gastric damage. Stress. 2014;17(6):528-37.
21. Fomenko I, Sklyarov A, Denysenko N, Hrycevych N, Dranitsyna A, Wallace J. Interactions between nitric oxide and hydrogen sulfide generating systems in gastric mucosa under condition of the combined action of stress and NDAIDs. J. Appl. Pharm. Sci. 2017;7:13-9.

«Вістник проблем біології і медицини» Випуск 3 (145), 2018 рік , 172-176 сторінки, код УДК 612-08-092.9:615.225

10.29254/2077-4214-2018-3-1-145-172-176