СТРУКТУРНО-ФУНКЦІОНАЛЬНІ ЗМІНИ УРАЖЕННЯ НИРОК ЩУРІВ ПРИ ОПІКОВІЙ ХВОРОБІ В ЕКСПЕРИМЕНТІ

Ніколенко Д. Є., Бабенко В. І., Филенко Б. М., Ройко Н. В., Кока В. М., Задворнова А. П.

ПАТОМОРФОЛОГІЯ

Наукова стаття

В статті досліджуються закономірності морфологічних змін моделі опікової хвороби на основі вивчення структурно-фукціональних рівнів пошкодження нирок щурів від локального термічного опіку шкіри та можливості їх регенераторної спроможності в експерименті. Морфологічне дослідження проведене на тканині нирок щурів, що зазнали термічної травми шкіри водою в експерименті (15 білих щурів-самців репродуктивного віку). Щурів виводили з експерименту згідно правил для піддослідних тварин через 24 години після початку експерименту та на 7 добу. Світлооптична мікроскопія гістологічних зрізів тканини нирок проводилась після забарвлення гематоксиліном та еозином за стандартними методиками та додатково використовували забарвлення пікрофуксином за методикою Ван-Гізон. В кінці 1 доби спостерігали запустіння судин кіркового шару і виражене повнокрів’я мікроциркуляторного русла мозкового шару з вогнищевими крововиливами. Спостерігалася дистрофія та десквамацією подоцитів, ендотеліоцитів та фрагментацією базальної мембрани капілярів клубочків. При забарвленні тканини нирки пікрофуксином за Ван-Гізон виявлено, що волокнисті елементи сполучної тканини носять фрагментарний характер. Просвіти частини канальців мозкового шару надмірно розтягнуті з вогнищами тубулорексису. В цитоплазмі нефротелію спостерігається гідропічна дистрофія та вакуолізація ядер з ділянками фокального колікваційного некрозу. Після семи діб опікової хвороби спостерігається покращення гемодинаміки в більшості ниркових тілець кіркової речовини, повної регенерації капілярів з відновленням фільтраційної функції, а також неповна регенерація у вигляді рубцювання в ниркових тільцях. Відновлення кровопостачання паренхіми нефронів супроводжується повною регенерацією епітелію канальців кіркової та мозкової речовини. Встановлено, що перша доба впливу опікової травми супроводжується гіпоксією тканини нирок, юкстамедулярним шунтуванням кровотоку та морфологічними альтеративними змінами ниркових клубочків та канальців. На 7-му добу відмічаються явища регенерації пошкоджених структур при збереженні запальної реакції в цих ділянках.

опікова хвороба, пошкодження нирок, регенерація, морфологія.

1. Jeschke MG, van Baar ME, Choudhry MA. Chung KK, Gibran NS, Logsetty S. Burn injury. Nat Rev Dis Primers. 2020;6:11. DOI: 10.1038/ s41572-020-0145-5.
2. Barrett LW, Fear VS, Waithman JC, Wood FM, Fear MW. Understanding acute burn injury as a chronic disease. Burns & Trauma. 2019;7:23. DOI: 10.1186/s41038-019-0163-2.
3. Soussi S, Legrand M. Hemodynamic coherence in patients with burns. Best Pract. Res. Clin. Anaesthesiol. 2016;30(4):437-43.
4. Chen B, Zhao J, Zhang Z, Li G, Jiang H, Huang Y, et al. Clinical characteristics and risk factors for severe burns complicated by early acute kidney injury. Burns. 2020;46(5):1100-1106. DOI: 10.1016/j.burns.2019. 11.018.
5. Tryggvason K, Patrakka J, Wartiovaava J. Hereditary proteinuria syndromes and mechanisms of proteinuria. New England Journal of Medicine. 2006;354(13):1387-1401. DOI: 10.1056/NEJMra052131.
6. Sovhyria SN, Filenko BM, Royko NV, Starchenko II, Pyatybratov AYu, Kyslyy VF. COVID-19-related aspects of morphological and pathophysiological changes in the kidneys. Azerbaijan Medical Journal. 2022;1:125-130. DOI: 10.34921/amj.2022.1.020.
7. Bilash SM, Bilash VP, Koptev MM, Deviatkina NM, Vynnyk NI, Filenko BM, et al. Stress-Protected Effect of Torasemide in Acute Immobilization Stress in Rats. Journal of International Dental and Medical Research. 2021;14(2):806-811.
8. Wurzer P, Culnan D, Cancio LC, Kramer GC. Total Burn Care. 5th ed. Elsevier; 2018. Chapter 8, Pathophysiology of Burn Shock and Burn Edema. p. 66-76.e3. DOI: 10.1016/B978-0-323-47661-4.00008-3.
9. Clark A, Neyra JA, Madni T, Imran J, Phelan H, Arnoldo B, et al. Acute kidney injury after burn. Burns. 2017;43:898-908.
10. Anisimova LV, Pisarev AA, Kubyshkin AV, Golubinskaya EP, Shramko YuI. Rats’ kidneys morphofunctional changes and hemostasis system state in reperfusion syndrome development. Journal of ural medical academic science. 2019;17(1):5-17.
11. Chapman CL, Johnson BD, Parker MD, Hostler D, Pryor RR, Schlader Z. Kidney physiology and pathophysiology during heat stress and the modification by exercise, dehydration, heat acclimation and aging. Temperature. 2021;8(2):108-159. DOI:10.1080/23328940.2020.1826841.
12. Greenhalgh DG. Management of Burns. N Engl J Med. 2019;380:2349-59. DOI: 10.1056/NEJMra1807442.
13. Sandoval AGW, Maden M. Regeneration in the spiny mouse, Acomys, a new mammalian model. Current Opinion in Genetics & Development. 2020;64:31-36. DOI: 10.1016/j.gde.2020.05.019.
14. Romagnani P, Anders H-J. What can tubular progenitor cultures teach us about kidney regeneration? Kidney International. 2013;83(3):351- 353. DOI: 10.1038/ki.2012.437.
15. Gallegos TF, Kamei CN, Rohly M, Drummond IA. Fibroblast growth factor signaling mediates progenitor cell aggregation and nephron regeneration in the adult zebrafish kidney. Developmental Biology. 2019;454(1):44-51. DOI: 10.1016/j.ydbio.2019.06.011.
16. Asadujjaman M, Jang DJ, Cho KH, Hwang SR, Jee JP. Extracellular Vesicles: The Next Frontier in Regenerative Medicine and Drug Delivery. Bioinspired Biomaterials. 2020;1249:143-160. DOI: 10.1007/978-981-15-3258-0_10.
17. Grange C, Skovronova R, Marabese F, Bussolati B. Stem Cell-Derived Extracellular Vesicles and Kidney Regeneration. Cells. 2019;8(10):1240. DOI: 10.3390/cells8101240.

«Вістник проблем біології і медицини» Випуск 2 Том 2 (165), 2022 рік , 175-183 сторінки, код УДК 616.61-001.1:599.323.4:612.8

10.29254/2077-4214-2022-2-2-165-175-183