Волкова Н. О., Юхта М. С., Чернишенко Л. Г., Степанюк Л. В., Сокіл Л. В., Гольцев А. М.

ВПЛИВ РЕЖИМІВ ВІДІГРІВУ НА МОРФОФУНКЦІОНАЛЬНИЙ СТАН КРІОКОНСЕРВОВАНИХ ЗВИТИХ КАНАЛЬЦІВ СІМ’ЯНИКІВ


Про автора:

Волкова Н. О., Юхта М. С., Чернишенко Л. Г., Степанюк Л. В., Сокіл Л. В., Гольцев А. М.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

У роботі проведено порівняльну оцінку впливу різних режимів відігріву на морфофункціональні характеристики сім’яних канальців статевонезрілих щурів після кріоконсервування з використанням повільних швидкостей охолодження до –70°С впродовж 40 хв. з наступним зануренням у рідкий азот. На основі результатів аналізу показників загальної активності ЛДГ, системи АОЗ, МТТ-тесту та гістоморфометричних даних встановлено, що для зразків звитих канальців сім’яників статевонезрілих щурів кріоконсервованих з неконтрольованою повільною швидкістю охолодження оптимальним режимом відігріву є водяна баня при 40°С з попередньою інкубацією їх у парах рідкого азоту.

Ключові слова:

сім’яні канальця, статевонезрілі щури, кріоконсервування, відігрів, метаболічна активність, антиоксидантний захист.

Список цитованої літератури:

  1. Easley C, Simerly C, Schatten G. Stem cell therapeutic possibilities: future therapeutic options for male-factor and female-factor infertility? Reprod Biomed Online [Internet]. 2013 Mar [cited 2020 May 12];27(1):75-80. Available from: https://www.rbmojournal.com/article/S1472- 6483(13)00129-6/fulltext
  2. Volkova NА, Yukhta MS, Yurchuk ТА, Ivanova ED, Stepanuk LV, Pavlovich EV, Sokol LV. Multipotent mesenchymal stromal cells of bone marrow in therapy of chronic inflammation of murine ovaries. Biotechnologia Acta. 2014;7(5):35-42.
  3. Кeros V, Hultenby K, Borgstrоm B, Fridstrоm M, Jahnukainen K, Hovatta O. Methods of cryopreservation of testicular tissue with viable spermatogonia in pre-pubertal boys undergoing gonadotoxic cancer treatment. Hum Reprod. 2007;22:1384-95.
  4. Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 2000;408:239-47.
  5. Amani H, Habibey R, Hajimiresmail SJ, Latifi S, Latifi S, Pazoki-Toroudi H, Akhavan O. Antioxidant nanomaterials in advanced diagnoses and treatments of ischemia reperfusion injuries. J Mater Chem. B. 2017;5:9452.
  6. Lintz JA, Dalio MB, Joviliano EE, Piccinato CE. Ischemic pre and postconditioning in skeletal muscle injury produced by ischemia and reperfusion in rats. Acta Cir Bras. 2017;28(6):441.
  7. Volkova N, Yukhta M, Goltsev A. Biopolymer gels as a basis of cryoprotective medium for testicular tissue of rats. Cell and tissue banking. 2018;19(4):819-26.
  8. Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983;65(1-2):55-63.
  9. Nagamatsu G, Katsuhiko H. Stem cells, in vitro gametogenesis and male fertility. Reproduction. 2017;154(6):F79-F91.
  10. Majzoub A, Agarwal A. Systematic review of antioxidant types and doses in male infertility: Benefits on semen parameters, advanced sperm function, assisted reproduction and live-birth rate. Arab J Urol. 2018;16(1):113-24.
  11. Syazili M, Hanif F. The protective effect of phizophora apiculata bark extract against testicular damage induced by cigarette smoke in male rats. ActaBiolna. 2019;2(1):23-31.

Публікація статті:

«Вістник проблем біології і медицини» Випуск 2 (156), 2020 рік , 249-253 сторінки, код УДК 612.617.1:615.014.41:539.21-022.532

DOI: