Яковенчук Н. М.

ЕКСПРЕСІЯ МЕТАЛЛОПРОТЕЇНАЗИ-1 В СУГЛОБОВОМУ ХРЯЩУ ТА СУБХОНДРАЛЬНІЙ КІСТЦІ В УМОВАХ ОСТЕОАРТРОЗУ ТА ОСТЕОПОРОЗУ (ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНО-КЛІНІЧНЕ ДОСЛІДЖЕННЯ)


Про автора:

Яковенчук Н. М.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

На сьогодні патогенез порушень в суглобовому хрящі розглядають в єдності зі станом субхондральної кістки. В полі зору дослідників перебувають металопротеїнази (ММП), які індукують дегенерацію сполучної тканини. Метою дослідження було вивчення експресії ММП-1 клітинами суглобового хряща і субхондральної кістки колінного суглоба щурів в умовах моделювання остеопорозу та остеоартрозу шляхом оваріоектомії та на клінічному матеріалі хворих, яким виконано ендопротезування колінного суглобу. На основі іммуногістохімічного дослідження визначено, що в умовах індукованого остеопорозу та остеоартрозу в щурів експресія ММП-1 відмічається в хондроцитах усіх зон суглобового хряща з підвищенням інтенсивності в поверхневій та проміжній зонах. У синовіальному шарі капсули суглоба та міжтрабекулярних просторах субхондральної кістки рівень експресії ММП-1 був високий. На кісткових трабекулах поодинокі остеоцити експресували ММП-1. Руйнування клітин супроводжувалося накопичуванням ММП-1 в ретикуловолокнистій стромі міжтрабекулярних просторів. У разі артрозу III-IV стадії за Kellengren (матеріал хворих) на тлі виражених дегенеративних змін в суглобовому хрящу лише поодинокі присутні клітини експресували ММП-1, однак виявлено ділянки матрикса з накопиченням ММП-1. За сумарною напівкількісною оцінкою (бали) імунопозитивність була в 1,7 та 1,9 рази більше в суглобовому хрящу порівняно з кісткою на клінічному матеріалі та в експерименті, відповідно.

Ключові слова:

матриксна металлопротеїназа-1 (ММП-1), щури, моделювання артрозу, колінний суглоб, суглобовий хрящ, субхондральна кістка, тканини суглобу після ендопротезування.

Список цитованої літератури:

  1. Liu J, Khalil RA. Matrix Metalloproteinase Inhibitors as Investigational and Therapeutic Tools in Unrestrained Tissue Remodeling and Pathological Disorders. Prog Mol Biol Transl Sci. 2017;148:355-420.
  2. Cui N, Min H, Raouf AK. Biochemical and Biological Attributes of Matrix Metalloproteinases. Prog Mol Biol Transl Sci. 2017;147:1-73.
  3. Paiva KBS, Granjeiro JM. Matrix Metalloproteinases in Bone Resorption, Remodeling, and Repair. Prog Mol Biol Transl Sci. 2017;148:203-303.
  4. Liang HPH, Xu J, Jackson CJ. Matrix metalloproteinases in bone development and pathology: current knowledge and potential clinical utility. Dove Medical Press. 2016;3:93-102.
  5. Markelova EV, Zdor VV, Romanchuk AL, Birko ON. Matriksnyie metalloproteinazyi ih vzaimosvyaz s sistemoy tsitokinov, diagnosticheskiy i prognosticheskiy potentsial. Immunopatologiya, Allergologiya, Infektologiya. 2016;2:11-22. [in Russiаn].
  6. Yan ZW, Dong J, Qin CH, Zhao С, Miao L, He C. Therapeutic Effect of Chenodeoxycholic Acid in an Experimental Rabbit Model of Osteoarthritis Mediators Inflamm. 2015;2015:780-9.
  7. Vean SA, Zainab A, Aldaher SH, Abdul-Kareem, Heba FH. Estimation of Serum Matrix Metalloproteinases-1 Levels in Iraqi Female Patients with Osteoarthritis. Int J Med Res Health Sci. 2018;7(5):18-22.
  8. Brandon JR, David L, Kooyman A. Tale of Two Joints: The Role of Matrix Metalloproteases in Cartilage Biology. Dis Markers. 2016;2016:7.
  9. Burrage PS, Mix KS, Brinckerhoff CE. Matrix metalloproteinases: role in arthritis. Front Biosci. 2006 Jan 1;11:529-43.
  10. Rogova LN, Zamechnik TB, Fastova IA, Shesternina NV. Matriksnyie metalloproteinazyi, ih rol v fiziologicheskih i patologicheskih protsessah (obzor). Vestnik novyih meditsinskih tehnologiy. 2011;2:86-9. [in Russiаn].
  11. Meszaros E, Malemud CJ. Prospects for treating osteoarthritis: enzyme–protein interactions regulating matrix metalloproteinase activity. Ther Adv Chronic Dis. 2012;3(5):219-29.
  12. Povoroznyuk VV, Dedukh NV, Grigoreva NV, Gopkalova IV. Eksperimentalnyiy osteoporoz. K.: 2012. 228 s. [in Russian].
  13. Povoroznyuk VV, Grigoreva NV. Osteoartroz u zhenshin v postmenopauze: faktory riska i svyaz s kostnoj tkanyu. Endokrinologiya. 2012;6(8):64- 71. [in Russian].
  14. Lelovas PP, Xanthos TT, Thoma SE, Lyritis GP, Dontas IA. The Laboratory Rat as an Animal Model for Osteoporosis. Research Comp Med. 2008;58(5):424-30.
  15. Evropeyska konventsiya pro zahist hrebetnih tvarin, scho vikoristovuyutsya dlya doslidnih ta inshih naukovih tsiley. Strasburg, 18 bereznya 1986 roku: ofltsiyniy pereklad [Internet]. Verhovna Rada Ukrayni. Ofits. veb-sayt. (Mizhnarodniy dokument Radi Evropi). Dostupno: http: zakon.rada.gov.ua/cgi-bin/laws/main.cgi?nreg=994_137 [in Ukrainian].
  16. Zakon Ukrayini № 3447-IV vіd 21.02.2006 «Pro zahist tvarin vid zhorstokogo povodzhennya» (Stattya 26). [in Ukrainian].
  17. Yakovenchuk NM, Diedukh NV. Morfolohiia suhlobovoho khriashcha ta subkhondralnoi kistky pislia modeliuvannia osteoporozu. Visnyk problem biolohii i medytsyny. 2017;4(3):324-7. [in Ukrainian].
  18. Sarkisov DS, Perov YuL. Mikroskopicheskaya tehnika. M.: Meditsina; 1996. 544 s. [in Russiаn].
  19. Bilash SM, Pronina OM, Koptev MM. Comprehensive morphological studies as an intergal part of modern medical science. Literature review. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2019;2.2(151):20-3. DOI: 10.29254/2077-4214-2019-2-2-151-20-23
  20. Qureshi A, Pervez S. Allred scoring for ER reporting and it’s impact in clearly distinguishing ER negative from ER positive breast cancers. Journal Pakistan Medical Association. 2010;60(5):350-3.
  21. Allred DC, Harvey JM, Berardo M, Clark GM. Prognostic and predictive factors in breast cancer by immunohistochemical analysis. Mod Pathol. 1998;11:155-68.
  22. Collins LC, Botero ML, Schnitt SJ. Bimodal Frequency Distribution of Estrogen Receptor Immunohistochemical Staining Results in Breast Cancer An Analysis of 825 Cases. Am J Clin Pathol. 2005;123:16-20.
  23. Chand P, Garg A, Singla V, Rani N. Evaluation of Immunohistochemical Profile of Breast Cancer for Prognostics and Therapeutic Use. Niger J Surg. 2018;24(2):100-6.
  24. Rose BJ, Kooyman DL. A Tale of Two Joints: The Role of Matrix Metalloproteases in Cartilage Biology. Dis Markers. 2016;2016:4895050.7.
  25. Kardos D, Marschall B, Simon M, Hornyák I, HinsenkampA, Kuten O, et al. Investigation of Cytokine Changes in Osteoarthritic Knee Joint Tissues in Response to Hyperacute Serum. Treatment Cells. 20198(8):824.
  26. Wu H, Du I, Zheng O. Expression of MMP-1 in cartilage and synovium of experimentally induced rabbit ACLT traumatic osteoarthritis: Immunohistochemical study. Rheumatology International. 2008;29(1):31-6.
  27. Grigoryan AV, Dimitrova AA, Kostov KG, Ruseva AL, Atanasova MA, Blazhev AB, et al. Serum concentrations of matrix metalloproteinase-9, -13 and TIMP-1 in an ovariectomized Wistar rat model of osteoporosis. Archives of the Balkan Medical Union Copyright. 2017;52(4):391-6.

Публікація статті:

«Вістник проблем біології і медицини» Випуск 3 (152), 2019 рік , 319-324 сторінки, код УДК 616.728.3-002-001-08

DOI: