Волкова Н. А., Юхта М. С., Чернышенко Л. Г., Степанюк Л. В., Сокол Л. В., Гольцев А. Н.

ВЛИЯНИЕ РЕЖИМОВ ОТОГРЕВА НА МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ КРИОКОНСЕРВИРОВАННЫХ ИЗВИТЫХ КАНАЛЬЦЕВ СЕМЕННИКОВ


Об авторе:

Волкова Н. А., Юхта М. С., Чернышенко Л. Г., Степанюк Л. В., Сокол Л. В., Гольцев А. Н.

Рубрика:

МОРФОЛОГИЯ

Тип статьи:

Научная статья.

Аннотация:

В работе проведена сравнительная оценка влияния различных режимов отогрева на морфофункциональные характеристики семенных канальцев неполовозрелых крыс после криоконсервирования с использованием медленных скоростей охлаждения до -70°С в течение 40 мин с последующим погружением жидкий азот. На основе результатов анализа показателей общей активности ЛДГ, системы АОЗ, МТТ-теста и гистоморфометрических данных установлено, что для образцов извитых канальцев семенников неполовозрелых крыс криоконсервированных с неконтролируемой медленной скоростью охлаждения оптимальным режимом отогрева является водяная баня при 40°С с предварительной инкубацией их в парах жидкого азота.м

Ключевые слова:

семенные канальца, неполовозрелые крысы, криоконсервирование, отогрев, метаболическая активность, антиоксидантная защита.

Список цитируемой литературы:

  1. Easley C, Simerly C, Schatten G. Stem cell therapeutic possibilities: future therapeutic options for male-factor and female-factor infertility? Reprod Biomed Online [Internet]. 2013 Mar [cited 2020 May 12];27(1):75-80. Available from: https://www.rbmojournal.com/article/S1472- 6483(13)00129-6/fulltext
  2. Volkova NА, Yukhta MS, Yurchuk ТА, Ivanova ED, Stepanuk LV, Pavlovich EV, Sokol LV. Multipotent mesenchymal stromal cells of bone marrow in therapy of chronic inflammation of murine ovaries. Biotechnologia Acta. 2014;7(5):35-42.
  3. Кeros V, Hultenby K, Borgstrоm B, Fridstrоm M, Jahnukainen K, Hovatta O. Methods of cryopreservation of testicular tissue with viable spermatogonia in pre-pubertal boys undergoing gonadotoxic cancer treatment. Hum Reprod. 2007;22:1384-95.
  4. Finkel T, Holbrook NJ. Oxidants, oxidative stress and the biology of ageing. Nature. 2000;408:239-47.
  5. Amani H, Habibey R, Hajimiresmail SJ, Latifi S, Latifi S, Pazoki-Toroudi H, Akhavan O. Antioxidant nanomaterials in advanced diagnoses and treatments of ischemia reperfusion injuries. J Mater Chem. B. 2017;5:9452.
  6. Lintz JA, Dalio MB, Joviliano EE, Piccinato CE. Ischemic pre and postconditioning in skeletal muscle injury produced by ischemia and reperfusion in rats. Acta Cir Bras. 2017;28(6):441.
  7. Volkova N, Yukhta M, Goltsev A. Biopolymer gels as a basis of cryoprotective medium for testicular tissue of rats. Cell and tissue banking. 2018;19(4):819-26.
  8. Mossman T. Rapid colorimetric assay for cellular growth and survival: application to proliferation and cytotoxicity assays. J Immunol Methods. 1983;65(1-2):55-63.
  9. Nagamatsu G, Katsuhiko H. Stem cells, in vitro gametogenesis and male fertility. Reproduction. 2017;154(6):F79-F91.
  10. Majzoub A, Agarwal A. Systematic review of antioxidant types and doses in male infertility: Benefits on semen parameters, advanced sperm function, assisted reproduction and live-birth rate. Arab J Urol. 2018;16(1):113-24.
  11. Syazili M, Hanif F. The protective effect of phizophora apiculata bark extract against testicular damage induced by cigarette smoke in male rats. ActaBiolna. 2019;2(1):23-31.

Публикация статьи:

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 2 (156), 2020 год, 249-253 страницы, код УДК 612.617.1:615.014.41:539.21-022.532

DOI: