Билаш С. М., Донченко С. В.

МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ НАДПОЧЕЧНИКОВ ПРИ ДЕЙСТВИИ КОМПЛЕКСА ПИЩЕВЫХ ДОБАВОК (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)


Об авторе:

Билаш С. М., Донченко С. В.

Рубрика:

ОБЗОРЫ ЛИТЕРАТУРЫ

Тип статьи:

Научная статья.

Аннотация:

В этой статье представлен обзор литературы с целью раскрыть информацию о строении надпочечников крыс и влияние комплекса пищевых добавок на них. В последние десятилетия усилилось негативное влияние экологически неблагоприятных факторов на организм. Информации об изменениях в организме практически не существует, когда поступает несколько пищевых добавок, которые имеют доказанный негативное влияние на отдельные системы. Глутамат натрия может быть причиной астмы, крапивницы, ангионевротического отека, ринита, ожирение, которые называют «симптомокомплексом глутамата натрия». Глутамат натрия связывают с неврологическими нарушениями: тревожность, шизофрения, эпилепсия, депрессия и дегенеративные расстройства, такие как болезнь Паркинсона и болезнь Альцгеймера. При введении крысам большого количества глутамата натрия наблюдалось значительное уменьшение толщины коры надпочечников, потеря параллельного расположения клеток пучковой зоны, расширение и переполнение капилляров, большое количество макрофагов, что выстилают синусоиды, апоптоз ядер. Нитрит натрия может вызывать серьезные отравления (образует метгемоглобин) и привести к параличу сосудистого центра и смерти. В эксперименте на крысах наблюдались вазодилатация и скопления апоптозных клеток. Понсо 4R является потенциальным аллергеном и может быть причиной анафилактического шока. В эксперименте приводит к гипотрофии надпочечников. Понсо 4R входит в перечень красителей, которые провоцируют гиперактивность у детей.Таким образом, ограниченные данные о влиянии комплекса пищевых добавок на надпочечники, практическое значение этой проблемы (использование глутамата натрия, нитрита натрия и Понсо 4R) является теоретической основой для формулирования цели и постановки задач для исследования. Следовательно, при отсутствии достаточного количества информации о влиянии глутамата натрия, нитрита натрия и Понсо 4R, данное исследование будет актуальным.

Ключевые слова:

надпочечники, крысы, пищевые добавки, химические вещества, глутамат натрия, нитрит натрия, Понсо 4R.

Список цитируемой литературы:

  1. Yevstratov RM. Sovremennyye vozmozhnosti khirurgicheskogo lecheniya dobrokachestvennykh novoobrazovaniy nadpochechnikov [dissertatsiya]. Ryazan’; «Ryazanskiy gosudarstvennyy medntsnnskny universitet imeni akademika I.P. Pavlova»; 2018. 138 s. [in Russian].
  2. Bel’tsevich DG, Mel’nichenko GA, Kuznetsov NS, Troshina YeA, Platonova NM, Vanushko VE, i dr. Klinicheskiye rekomendatsii Rossiyskoy assotsiatsii endokrinologov po differentsial’noy diagnostike intsidentalom nadpochechnikov. Endokrinnaya khirurgiya. 2016;10(4):31-42. [in Russian].
  3. Bel’tsevich DG. Differentsial’naya diagnostika intsidentalom nadpochechnikov. Problemy endokrinologii. 2011;6:3-8. [in Russian].
  4. Lenders JW, Eisenhofer G, Mannelli M, Pacak K. Phaeochromocytoma. Lancet. 2005;366:665-75.
  5. Fardella CE, Mosso L, Gomez Sanchez CE. Premary hyperaldosteronism in essential hypertensives: prevalence, biochemical profile, and molecular biology. J. Clin. Endocrinol. Metab. 2000;85:1863-7.
  6. Drucker-Colin R, Verdugo-Diaz L. Cell transplantation for Parkinson’s disease: present status. Cell. Mol. Neurobiol. 2004;24(3):301-6.
  7. Maruyama M, Kenmochi T, Sakamoto K. Simplified method for cryopreservation of islets using hydroxyethyl starch and dimethyl sulfoxide as cryoprotectants. Transplant. Proc. 2004;36(4):1133-4.
  8. Valk J, Brunner D, De Smet K. Optimization of chemically defined cell culture media-replacing fetal bovine serum in mammalian in vitro methods. Toxicology. 2010;24(4):1053-63.
  9. Kirillov OI. Stressovaya gipertrofiya nadpochechnikov [dissertatsiya]. Vladivostok. Institut morfologii cheloveka Rossiyskoy akademii meditsinskikh nauk; 1996. 25 s. [in Russian].
  10. Rossi GP. Surgically correctable hypertension caused by primary aldosteronism. Best Pract. Res. Clin. Endocrinol. Metab. 2006;20:385- 400.
  11. Afanas’yev YuI. Gistologiya, embriologiya. M.: GEOTAR-Media; 2018. 800 s. [in Russian].
  12. Lutsyk OD, Chaykovsʹkyy YuB. Histolohiya, tsytolohiya, embriolohiya. Vinnytsya: Nova knyha; 2018. 591 s. [in Ukrainian].
  13. Lutsyk OD, Ivanova AY, Kabak KS, Chaykovsʹkyy YuB. Histolohiya lyudyny. Kyyiv: Knyha-plyus; 2010. 582 s. [in Ukrainian].
  14. Balʹ-Prylypko LV. Aktualʹni problemy haluzi. Kyyiv; 2010. 374 s. [in Ukrainian].
  15. Morrison JFB, Shehab SS, Dhanasekaran R, Shaffiullah S, Mohammed MB. Sensory and autonomic nerve changes in the monosodium glutamate-treated rat: A model of type II diabetes. Experimental Physiology. 2008;93(2):213-22.
  16. Freeman V. Reconsidering the effects of monosodium glutamate. Acad. Narse Pract. 2006;18(10):482-6.
  17. Schaumburg H, Robert B, Robert G, Jan HM. Monosodium L-Glutamate: Its Pharmacology and Role in the Chinese Restaurant Syndrome. Science. 1969;163(3869):826-8.
  18. Okubo Y, Lino M, Sekiya H, Namiki S, Sakamoto H, Iinuma S, еt al. Imaging extrasynaptic glutamate dynamics in the brain. Proceedings of the National Academy of Sciences. 2010 Apr 6;107(14):6526-31.
  19. Othman SI, Jumah MB. Histomorphological Changes in Mono-sodium Glutamate Induced Hepato-renal Toxicity in Mice. International Journal of Pharmacology. 2010;15(4):449-56.
  20. Seo HJ, Ham HD, Jin HY, Lee WH, Hwang HS, Park SA, et al. Chronic administration of monosodium glutamate under chronic variable stress impaired hypothalamic-pituitary-adrenal axis function in rats. Korean Journal of Physiology and Pharmacology. 2010;14(4):213-21.
  21. Sainz JM, Cecilia R, Mondillo C. Effects of nitric oxide on aldosterone synthesis and nitric oxide synthase activity in glomerulosa cells from bovine adrenal gland. Endocrine. 2004;24(1):61-71.
  22. Bojanovi MS, Simonovi M, Ceki M. Study on Adrenal Gland Morphology in Mice. Medicine and Biology. 2007;14(3):128-32.
  23. Fadia A, Hassan K, Zeinab A, Dalia M. Monosodium glutamate induced histological change in the Zona Fasiculata of rats’ adrenal and the possible amelioration effect of vitamin C supplementation. Journal of Medicine and Health Sciences Research. 2018;1(1):1-7.
  24. Perello M, Console G, Gaillard RC, Spinedi, E. Analysis of angiotensin II- and ACTH-driven mineralocorticoid functions and omental adiposity in a non-genetic, hyperadipose female rat phenotype. Endocrine. 2010;37(3):497-506.
  25. Williams AN, Woessner KM. Monosodium glutamate “allergy”: Menace or myth? Clinical and Experimental Allergy. 2009;39:640-6.
  26. Martins CP, Borges HE, Garcia RM. Monosodium L-glutamate-induced obesity impaired the adrenal medullae activity. Neuroscience Research Communications. 2001;28(1):49-58.
  27. Skotarenko TA. Reaktsiya zon kory nadnyrnyka pry vvedenni kriokonservovanoyi platsenty u shchuriv. Aktualʹni problemy suchasnoyi medytsyny: Visnyk Ukrayinsʹkoyi medychnoyi stomatolohichnoyi akademiyi. 2016;2(54):238-41. [in Ukrainian].
  28. Yeroshenko HA, Bilash SM, Pronina OM, Koptev MM, Yachminʹ AI. Strukturni zminy nyrok shchuriv pry hostromu immobilizatsiynomu stresovi ta yikh korektsiya. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2019;3(152):294-7. [in Ukrainian].
  29. Othman SI, Jumah MB. Histomorphological Changes in Monosodium Glutamate Induced Hepato-renal Toxicity in Mice. International Journal of Pharmacology. 2019;15(4):449-56.
  30. Peng T, Hu Z, Yang X, Gao Y, Ma C. Nitrite-induced acute kidney injury with secondary hyperparathyroidism. Medicine. 2018;97(8):e9889.
  31. Nasibullin BA, Gozhenko AI. Vliyaniye ekzogennogo nitrita natriya na razvitiye pochek novorozhdennykh krysyat. Patologíya. 2008;5(3):157- 8. [in Russian].
  32. Kalapanda M. Appaiah. Monosodium Glutamate in Foods and its Biological Effects. In Ensuring Global Food Safety. 2010;13:217-8.
  33. Kolenchenko OO, Falayeyeva TM, Berehova TV, Kuryk OH. Strukturno-funktsionalʹni zminy v stintsi tovstoho kyshechnyka za umov vvedennya hlutamatu natriyu. Ukrayinsʹkyy zhurnal medytsyny, biolohiyi ta sportu. 2017;5:39-42. [in Ukrainian].
  34. Sabera Millan, Lakkoji Satish, Krishnendu Bera, Harekrushna Sahoo. Binding and inhibitory effect of the food colorants Sunset Yellow and Ponceau 4R on amyloid fibrillation of lysozyme. New Journal of Chemistry. 2019;9:3956-68.
  35. Leulescu M, Lacobescu G, Bojan M, Rotaru P. Ponceau 4R azoic red dye. Journal of Thermal Analysis and Calorimetry. 2019;138(11):2091- 101.

Публикация статьи:

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 3 (157), 2020 год, 13-19 страницы, код УДК 611.451:613.29]-092.9

DOI: