ДИНАМИКА МАРКЕРОВ РЕМОДЕЛИРОВАНИЯ КОСТНОЙ ТКАНИ У ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫХ ЖИВОТНЫХ ПРИ ПРИМЕНЕНИИ ОСТЕОТРОПНЫХ ПРЕПАРАТОВ ДЛЯ ВОССТАНОВЛЕНИЯ КОСТНЫХ ДЕФЕКТОВ

Лысоконь Ю. Ю.

СТОМАТОЛОГИЯ

Научная статья.

Для выяснения биохимических механизмов влияния остеотропных препаратов на костную ткань животных изучены изменения маркеров костного метаболизма и уровень кальцийрегулирующих гормонов в динамике экспериментального исследования. Цель исследования: исследовать эффективность применения остеоиндуктивных материалов для реконструкции дефектов костной ткани. Объект и методы исследования. Остеопластические свойства материалов исследовали на модели костного дефекта бедренной кости диафизарной зоны у крыс породы Вистар, четырехмесячного возраста. Активность щелочной фосфатазы определяли фотометрическим унифицированным методом. Общую кислую фосфатазу определяли фотометрическим оптимизированным кинетическим методом. Индекс минерализации вычисляли как соотношение активности ферментов ЛФ/КФ. Определение концентрации гидроксипролинапроводили фотометрически, а уровень кальцитонина в крови животных исследовался иммуноферментным методом. Результаты исследования. В результате исследования было выяснено, что наименьшие значения концентрации кальцитонина и гидроксипролина исследовали у подопытных животных III группы, где костный дефект восстанавливали предложенной нами композицией. По данным маркеров костного метаболизма, предложенная нами композиция («mp3 OsteoBiol» и обогащенная тромбоцитами плазму крови (ІІІ группа), способствует подавлению процессов остеопластической резорбции и вызывает оптимальные условия для улучшения структурных изменений минерального матрикса кости. Выводы. В экспериментах на лабораторных животных доказана способность композиции «mp3 OsteoBiol + ОТП» обеспечивать купирование костного дефекта за 60 суток.

маркеры костного метаболизма, остеотропные препараты, обогащенная тромбоцитами плазма, костная ткань.

1. Minisola S, Antonelli R, Mazzuoli G. Clinical significance of free plasma hydroxyproline measurement in metabolic bone disease. J Clin Chem Clin Biochem. 1985;23(9):515-9. DOI: 10.1515/cclm.1985.23.9.515
2. Atlante A, Passarella S, Quagliariello E. Spectroscopic study of hydroxyproline transport in rat kidney mitochondria. Biochem. Biophys. Res. Commun. 1994 Jul 15;202(1):58-64. DOI: 10.1006/bbrc.1994.1893
3. Prins HJ, Braat AK, Gawlitta D, Dhert WJ, Egan DA, Tijssen-Slump E, et al. In vitro induction of alkaline phosphatase levels predicts in vivo bone forming capacity of human bone marrow stromal cells. Stem Cell Res. 2014;12:428-40.
4. Atchuta A, Gooty JR, Guntakandla VR, Palakuru SK, Durvasula S, Palaparthy R. Clinical and radiographic evaluation of platelet-rich fibrin as an adjunct to bone grafting demineralized freeze-dried bone allograft in intrabony defects. J Indian Soc Periodontol. 2020;24(1):60-6. DOI: 10.4103/jisp.jisp_99_19
5. Choi BH, Zhu SJ, Kim BY, Huh JY, Lee SH, Jung JH. Effect of platelet-rich plasma (PRP) concentration on the viability and proliferation of alveolar bone cells: an in vitro study. Int J Oral Maxillofac Surg. 2015;34(4):420-4. DOI: 10.1016/j.ijom.2014.10.018
6. Young-Min SA, Cawston TE, Griffiths ID. Markers of joint destruction: principles, problems, and potential. Ann Rheum Dis. 2001;60(6):545- 8. DOI: 10.1136/ard.60.6.545a
7. Saleem M, Pisani F, Zahid FM. Adjunctive Platelet-Rich Plasma (PRP) in Infrabony Regenerative Treatment: A Systematic Review and RCT’s Meta-Analysis. Stem Cells Int. 2018;2018:9594235. Published 2018 Mar 19. DOI: 10.1155/2018/9594235
8. Rashed FM, GabAllah OM, AbuAli SY, Shredah MT. The Effect of Using Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells Versus Platelet Rich Plasma on the Healing of Induced Oral Ulcer in Albino Rats. Int J Stem Cells. 2019;12(1):95-106. DOI: 10.15283/ijsc18074
9. Singh R, Rohilla R, Gawande J, Kumar Sehgal P. To evaluate the role of platelet-rich plasma in healing of acute diaphyseal fractures of the femur. Chin J Traumatol. 2017;20(1):39-44. DOI: 10.1016/j.cjtee.2016.03.007
10. Kanis J, Cooper C, Rizzoli R. European guidance for the diagnosis and management of osteoporosis in postmenopausal women. Osteoporos Int. 2019 Jan;30(1):3-44. Available from: https://doi.org/10.1007/s00198-018-4704-5
11. Nguyen ATM, Tran HLB, Pham TAV. In Vitro Evaluation of Proliferation and Migration Behaviour of Human Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells in Presence of Platelet-Rich Plasma. Int J Dent. 2019;2019:9639820. Published 2019 Apr 9. DOI: 10.1155/2019/9639820
12. Cutando A, López-Valverde A, Gómez-de-Diego R, Arias-Santiago S, de Vicente-Jiménez J. Effect of gingival application of melatonin on alkaline and acid phosphatase, osteopontin and osteocalcin in patients with diabetes and periodontal disease. Med Oral Patol Oral Cir Bucal. 2013;18(4):e657-e663. Published 2013 Jul 1. DOI: 10.4317/medoral.18832
13. Dabra S, Singh P. Evaluating the levels of salivary alkaline and acid phosphatase activities as biochemical markers for periodontal disease: A case series. Dent Res J (Isfahan). 2012;9(1):41-5. DOI: 10.4103/1735-3327.92942

«Вестник проблем биологии и медицины» Выпуск 3 (157), 2020 год, 336-340 страницы, код УДК 591.84:591.111.1:616.71:001.891.5

10.29254/2077-4214-2020-3-157-336-340